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草珊瑚组培快繁技术研究

姜丽琼 李文俊 肖前刚 廖珂靖 徐志萍 廖兴勇 刘琼 浣杰

姜丽琼, 李文俊, 肖前刚, 等. 草珊瑚组培快繁技术研究[J]. 四川林业科技, 2020, 41(1): 100−104 doi: 10.12172/201910080002
引用本文: 姜丽琼, 李文俊, 肖前刚, 等. 草珊瑚组培快繁技术研究[J]. 四川林业科技, 2020, 41(1): 100−104 doi: 10.12172/201910080002
Jiang L Q, Li W J, Xiao Q G, et al. A study of tissue culture and rapid propagation of Sarcandra glabra[J]. Journal of Sichuan Forestry Science and Technology, 2020, 41(1): 100−104 doi: 10.12172/201910080002
Citation: Jiang L Q, Li W J, Xiao Q G, et al. A study of tissue culture and rapid propagation of Sarcandra glabra [J]. Journal of Sichuan Forestry Science and Technology, 2020, 41(1): 100−104 doi: 10.12172/201910080002

草珊瑚组培快繁技术研究


doi: 10.12172/201910080002
详细信息
    作者简介:

    姜丽琼(1978-),女,高级工程师,157041752@qq.com

    通讯作者: 李文俊(1976-),男,高级工程师,主要从事林业科技研究和推广工作,e-mail:157041752@qq.com
  • 基金项目:  成都市农林科学院2018年财政资金项目

A Study of Tissue Culture and Rapid Propagation of Sarcandra glabra

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    Corresponding author: 157041752@qq.com
  • 摘要: 4—10月分别剪取草珊瑚当年生带腋芽的半木质化枝条作为外植体,开展组织培养试验研究。结果表明:草珊瑚最理想的外植体为4—5月半木质化枝条的基部茎段;外植体最佳诱导培养基为B5+0.8 mg·L−1 6-BA+0.3 mg·L−1 NAA;最佳增殖培养基为B5+3.0 mg·L−1 6-BA+ 0.5 mg·L−1 NAA,平均增殖系数为6.82;最佳生根培养基为1/2B5+0.8 mg·L−1 IBA+0.1 mg·L−1 NAA,生根率为100%,根数可达6.51;以腐殖土∶椰糠∶珍珠岩∶泥土=5∶2∶1∶2为移栽基质,移栽成活率可达94%,组培苗长势好,叶色浓绿,植株健壮。
  • 图  1  不同增殖培养基诱导草珊瑚增殖系数

    Fig.  1  Proliferation coefficient of sarcandra glabra induced by different culture medium

    图  2  不同增殖培养基诱导草珊瑚株高

    Fig.  2  Plant height of Sarcandra glabra induced by different culture medium

    图  3  草珊瑚组织培养过程

    注:A.诱芽培养;B.增殖培养;C.生根培养;D.炼苗移栽

    Fig.  3  Tissue culture process of Sarcandra glabra

    Note: A. Induced bud formation; B. Proliferation culture; C. Rooting culture; D. Acclimatization and transplanting

    表  1  草珊瑚不同取样时间和接种部位感染率与死亡率一览表

    Tab.  1  Infection rate and mortality rate at different sampling times and inoculation sites of Sarcandra glabra

    取样时间
    Sampling time
    接种部位
    Inoculation sites
    感染率/%
    Infection rate
    死亡率/%
    Mortality rate
    4—5月顶芽+嫩茎11.7091.20
    基部茎段37.107.10
    7—8月顶芽+嫩茎35.30100.00
    基部茎段92.3011.70
    9—10月顶芽+嫩茎26.0092.50
    基部茎段66.7010.00
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    表  2  四种基本培养基诱导成芽结果统计

    Tab.  2  Statistics results on bud formation induced by four basic culture medium

    处理
    号No.
    基本培养
    基Basic
    medium
    6-BA
    mg·L−1
    NAA
    mg·L−1
    诱芽率/%
    Bud formation
    生长状况
    Growth status
    1组MS0.40.378.00芽长势慢,易变黑死亡
    2组MS0.80.380.00易变黑死亡
    3组1/2MS0.40.372.00单芽,叶色偏黄
    4组1/2MS0.80.374.00长势差,叶色偏黄
    5组B50.40.384.00芽长势慢
    6组B50.80.383.00芽壮,叶绿长势好,
    7组ER0.40.374.00芽小易变黑死亡
    8组ER0.80.378.00芽小易变黑死亡
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    表  3  草珊瑚增殖试验结果统计

    Tab.  3  Statistics results on proliferation test of sarcandra glabra

    编号
    No.
    6-BA
    mg·L−1
    NAA
    mg·L−1
    AC=0 g·L−1AC=1 g·L−1
    平均增殖系数
    Proliferation coefficient
    平均芽高/cm
    Bud height/cm
    生长状况
    Growth status
    平均增殖系数
    Proliferation coefficient
    平均芽高/cm
    Bud height/cm
    生长状况
    Growth status
    1组1.00.23.091.67茎粗短2.182.98芽少苗高生根现象
    2组1.00.53.271.98茎粗长势好2.093.17芽少苗高生根现象
    3组2.00.24.552.12叶小茎粗1.913.27芽少苗高生根现象
    4组2.00.54.272.95叶较大茎粗2.092.75芽少苗高生根现象
    5组3.00.26.552.72叶较大茎粗2.462.90芽少苗高生根现象
    6组3.00.56.822.98长势好2.093.02芽少苗高生根现象
    7组4.00.27.460.74叶小、芽成簇无长势2.362.73芽少有生根现象
    8组4.00.57.270.79叶小茎粗无长势2.272.70芽少有生根现象
    9组5.00.510.640.68叶小叶黄茎粗芽成簇2.182.63芽少有生根现象
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    表  4  草珊瑚生根培养试验结果统计

    Tab.  4  Statistics results of root culture test of Sarcandra glabra

    编号
    No.
    基本培养基
    Basic medium
    NAA
    mg·L−1
    IBA
    mg·L−1
    生根率/%
    Rooting rate /%
    平均生根数/条
    Rooting number
    平均株高/cm
    Plant height/cm
    生长状况
    Growth status
    1组1/2B50.10.495.504.563.83茎粗,叶大
    2组1/2B50.10.698.005.163.72茎较粗,叶大
    3组1/2B50.10.8100.006.513.51茎较粗壮,根较粗,叶大
    4组1/2B50.20.498.504.403.22茎粗壮,叶较大
    5组1/2B50.20.6100.003.883.92茎粗,叶较大
    6组1/2B50.20.8100.004.983.93茎较壮,根较粗、叶较大
    7组1/2B500.892.503.484.82茎细、根细长、叶小
    8组1/2B501.094.003.074.58茎细、根细长、叶小
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    表  5  草珊瑚炼苗移栽试验结果统计

    Tab.  5  Statistics results on acclimatization and transplant of Sarcandra glabra

    编号
    No.
    腐殖土
    humus
    soil
    椰糠
    Coconut bran
    珍珠岩
    Perlite
    泥土
    Soil
    成活率
    survival
    ratio/%
    生长情况
    Growth status
    1组901078.33苗弱,叶色偏黄
    2组801185.67苗较壮,叶色偏绿,
    3组711192.67苗较壮,叶色绿,
    4组521294.00苗壮,叶色绿、长势快
    5组531188.33苗较壮,叶小,叶绿
    6组601381.67苗较壮,叶小,叶绿
    7组1000080.67苗弱,叶小,叶色偏黄
    下载: 导出CSV
  • [1] 温柔,李潮,严丽萍,等. 基于多指标评价优选草珊瑚炮制工艺[J]. 中草药,2019,50(12):2868−2875. doi: 10.7501/j.issn.0253-2670.2019.12.019
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    [3] 杨城,王冉,王玥,等. 光照强度对草珊瑚光合特性的影响[J]. 林业与环境科学,2019,35(4):84−89. doi: 10.3969/j.issn.1006-4427.2019.04.014
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    [8] 任君芳, 张利, 刘建霞, 单凤娇, 刘千里, 李昌玉.  东方百合‘Vivian’高效离体快繁体系的建立 . 四川林业科技, 2020, 41(6): 84-88. doi: 10.12172/202009010001
    [9] 李佳蔓, 黄振, 杨汉波, 陈炙, 邢文曦, 靳伟, 郭洪英.  油樟组织培养技术研究 . 四川林业科技, 2019, 40(2): 42-47. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2019.02.010
    [10] 殷国兰, 陈宇.  红花油茶无性繁育技术研究进展 . 四川林业科技, 2017, 34(6): 13-16. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2017.06.004
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    [12] 王晓玲, 唐丽萍, 范雨, 罗晓波, 曾德刚.  红颜草莓茎尖组织培养的器官发生途径研究 . 四川林业科技, 2017, 34(6): 40-44. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2017.06.010
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    [14] 刘海鹰, 万雪琴, 刘均利, 杨晓蓉.  杉木优良无性系组培繁育技术研究 . 四川林业科技, 2016, 37(5): 1-6. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2016.05.001
    [15] 刘均利, 刘海鹰, 龙汉利, 吴宗兴, 武华卫, 杨晓蓉.  柳桉组培快繁技术体系研究 . 四川林业科技, 2016, 37(4): 74-78. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2016.04.016
    [16] 方娇阳, 冯德明, 贺梦莹, 贺曙春, 王晶鑫, 张磊.  落叶松愈伤组织诱导体系优化 . 四川林业科技, 2015, 36(5): 72-74,55. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2015.05.013
    [17] 罗晓波, 齐良富, 耿研会.  宜昌百合离体培养快繁技术研究 . 四川林业科技, 2015, 36(5): 75-78. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2015.05.014
    [18] 代仕高, 程秦明, 贺维, 辜云杰, 贾晨, 李佳泳, 张炜.  光果西南杨带芽茎段的组培技术研究 . 四川林业科技, 2015, 36(1): 38-42. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2015.01.009
    [19] 娄利华, 曾静, 蒋海燕, 晏巧, 王正春.  澳蜡花‘Snow Flake’的组织培养试验研究 . 四川林业科技, 2014, 35(2): 34-36,56. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2014.02.008
    [20] 杨晓蓉, 陈炙, 刘均利, 郭洪英.  金合欢组织培养技术研究 . 四川林业科技, 2013, 34(1): 67-69. doi: 10.16779/j.cnki.1003-5508.2013.01.016
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    出版历程
    • 收稿日期:  2019-10-08
    • 网络出版日期:  2019-12-20
    • 刊出日期:  2020-02-27

    草珊瑚组培快繁技术研究

    doi: 10.12172/201910080002
      作者简介:

      姜丽琼(1978-),女,高级工程师,157041752@qq.com

      通讯作者: 李文俊(1976-),男,高级工程师,主要从事林业科技研究和推广工作,e-mail:157041752@qq.com
    基金项目:  成都市农林科学院2018年财政资金项目

    摘要: 4—10月分别剪取草珊瑚当年生带腋芽的半木质化枝条作为外植体,开展组织培养试验研究。结果表明:草珊瑚最理想的外植体为4—5月半木质化枝条的基部茎段;外植体最佳诱导培养基为B5+0.8 mg·L−1 6-BA+0.3 mg·L−1 NAA;最佳增殖培养基为B5+3.0 mg·L−1 6-BA+ 0.5 mg·L−1 NAA,平均增殖系数为6.82;最佳生根培养基为1/2B5+0.8 mg·L−1 IBA+0.1 mg·L−1 NAA,生根率为100%,根数可达6.51;以腐殖土∶椰糠∶珍珠岩∶泥土=5∶2∶1∶2为移栽基质,移栽成活率可达94%,组培苗长势好,叶色浓绿,植株健壮。

    English Abstract

    • 草珊瑚(Sarcandra glabra Nakai),俗称满山香、观音茶、接骨木、九节茶等,是金栗兰科多年生常绿亚灌木,主要分布于我国长江以南各省区及东南亚等地[1]。草珊瑚是常用中药材,具有清热凉血、活血消斑、祛风通络之功效,临床上常用于血热发斑发疹、风湿痹痛、跌打损伤等[2]。同时其形态秀丽、四季馨香,具有极高的食用及观赏价值,草珊瑚适应性强,既可制作清雅小巧的盆栽,置于室内观赏,也可用于园林、庭院的绿化点缀[3]

      全国草珊瑚干品药材原料的需求量每年达万吨以上[4],随着草珊瑚需求的日益增加和野生资源减少,近年来在江西、福建、广西等地开始进行人工林下栽培[5]。种苗是草珊瑚扩大种植规模的关键。目前,草珊瑚主要采用播种、分株、扦插等方式进行栽培繁殖。种子苗存在变异,幼苗规格大小不一,而且还受育种时间、育种环境和材料多少的限制;硬枝扦插、分株繁殖受育苗时间、育种环境和材料多少的限制;而组织培养则不受时间和空间的限制,繁殖速度快,一年四季都可以批量生产优质健康、遗传特性一致的草珊瑚苗木[6-8]。目前,草珊瑚外植体消毒、接种与初代培养、继带与生根培养、炼苗驯化等方面已取得很多研究成果[9-11],一般采用MS为基本培养基,本研究比较了MS、1/2MS、B5、ER培养基的诱导效果,并对草珊瑚组织培养各个环节进行系统研究,建立草珊瑚组培快繁技术体系,可为草珊瑚的组培工厂化育苗和产业化发展利用提供技术服务。

      • 试验材料选自成都市农林科学院林业研究所科研种植园区引种的长势良好、健壮、无病虫害的草珊瑚优良单株,在不同时期剪取带腋芽的茎段作为供试材料。

      • 在4—5月、7—8月、9—10月分别取带腋芽的半木质化枝条作为外植体,预处理后置于超净工作台上。将外植体分成顶芽和茎段分别装入无菌瓶中,顶芽用0.1%氯化汞浸泡5~6 min,茎段用75%酒精处理30秒后用0.1%氯化汞浸泡8~10 min,无菌水冲洗6遍,用无菌滤纸吸干水分,剪成带1~2个腋芽的茎段接种于准备好的培养基上,25 ℃暗培养。接种后5~7 d观察并记录感染情况,30 d后统计感染率与死亡率,各处理重复3次。

        感染率(%)=感染外植体总数/接种外植体总数×100

        死亡率(%)=死亡外植体总数/接种外植体总数×100

      • 将无菌外植体分别接种于MS、1/2MS、B5、ER基本培养基中,每种培养基设置两种激素配比,分别为0.4 mg·L−1 6-BA+0.2 mg·L−1 NAA和0.8 mg·L−1 6-BA+0.3 mg·L−1 NAA先期暗培养,待腋芽萌发后转置400~800 lx、25 ℃的条件下培养,45 d后观察并统计其结果,各处理重复3次。

      • 以改良的B5为基本培养基,分别以6-BA(1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mg·L−1),NAA(0.2、0.5 mg·L−1),AC(0、1.0 g·L−1)作为激素配比,蔗糖为3%,共设置18个处理。接种后于25 ℃进行暗培养,培养20 d左右待新芽长出,在400~800 lx下培养,60 d后观察其生长情况并统计增殖系数,每处理重复3次。

        增殖系数=单个茎段继代一次后增殖总数/单个茎段总数

      • 以1/2B5为基本培养基,添加激素NAA(0.1、0.2 mg·L−1),IBA(0.1、0.3、0.5 mg·L−1),AC(0、1.0 g·L−1)多因子不同配比组合作为生根试验培养基。25 ℃左右,暗培养15 d左右,待其大部分小苗生根后放到光照强度为500~1 000 lx培养,60 d后在移栽洗苗时统计生根率和苗高,重复3次。

        生根率(%)=生根植株总数/接种植株总数×100

      • 将瓶苗从组培室移到自然环境中炼苗7 d后,洗去培养基,用0.1%多菌灵浸泡15~30分钟后进行移栽,移栽基质为腐殖土、珍珠岩、椰糠、泥土的不同配比组合。每种基质移栽50株草珊瑚苗,移栽后用薄膜覆盖,移栽后3 d喷洒1次杀菌剂后,以后每周用广谱杀菌剂(70%多菌灵、70%百菌清、70%甲基托布津1 000倍液交替使用)喷施,90 d后观察其生长情况并统计成活率。每处理重复3次。

        成活率(%)=移栽成活组培苗总数/移栽组培苗总数×100

      • 试验结果表明,顶芽+嫩茎作为外植体接种后感染率低,但死亡率极高,半木质化基部茎段感染率较高,但死亡率低;4—5月取样的外植体感染率和死亡率最低,7—10月取样接种的外植体感染率和死亡率最高,因此,建立无菌株的外植体应选用4—5月木质化程度较高且较粗壮的半木质化枝条的基部茎段。

        表 1  草珊瑚不同取样时间和接种部位感染率与死亡率一览表

        Table 1.  Infection rate and mortality rate at different sampling times and inoculation sites of Sarcandra glabra

        取样时间
        Sampling time
        接种部位
        Inoculation sites
        感染率/%
        Infection rate
        死亡率/%
        Mortality rate
        4—5月顶芽+嫩茎11.7091.20
        基部茎段37.107.10
        7—8月顶芽+嫩茎35.30100.00
        基部茎段92.3011.70
        9—10月顶芽+嫩茎26.0092.50
        基部茎段66.7010.00
      • 将无菌株接种于不同激素配比的4种基本培养基中进行诱芽培养,结果表明4种培养基均能诱导草珊瑚出芽。1/2MS培养基诱导的芽弱,叶色淡,且叶柄与茎段连接处容易产生白色愈伤从而使叶柄断裂;MS和ER培养基中的茎段诱芽率较低,叶柄处容易变黑导致整株变黑死亡;B5培养基对草珊瑚诱芽效果较好。因此,草珊瑚最佳诱芽培养基为B5+0.8 mg·L−1 6-BA+0.3 mg·L−1 NAA。

        表 2  四种基本培养基诱导成芽结果统计

        Table 2.  Statistics results on bud formation induced by four basic culture medium

        处理
        号No.
        基本培养
        基Basic
        medium
        6-BA
        mg·L−1
        NAA
        mg·L−1
        诱芽率/%
        Bud formation
        生长状况
        Growth status
        1组MS0.40.378.00芽长势慢,易变黑死亡
        2组MS0.80.380.00易变黑死亡
        3组1/2MS0.40.372.00单芽,叶色偏黄
        4组1/2MS0.80.374.00长势差,叶色偏黄
        5组B50.40.384.00芽长势慢
        6组B50.80.383.00芽壮,叶绿长势好,
        7组ER0.40.374.00芽小易变黑死亡
        8组ER0.80.378.00芽小易变黑死亡
      • 以不同激素配比的改良B5诱导无菌芽进行增殖培养,由表3图1可以看出,草珊瑚在没加入活性炭(AC)的培养基中,芽的增殖系数随6-BA的增加而增加,而芽的高度在6-BA小于4 mg·L−1时变化不大,当浓度大于4 mg·L−1时,高度则随6-BA浓度的增大而变矮,植株叶子泛黄变小且较脆,茎节变短粗,植株不长高。由表3图2可以看出,草珊瑚在加入1 mg·L−1 AC的培养基中,芽的增殖系数和高度随6-BA的增加变化不大,与不加AC相比,能明显增加植株的高度,而且植株容易生根,适合生根之前的壮苗培养。综上所述,AC=0 mg·L−1,B5+3.0 mg·L−1 BA+0.5 mg·L−1 NAA培养基对芽的增殖系数和株高等综合表现最好,是草珊瑚增殖继代最佳培养基配方。

        图  1  不同增殖培养基诱导草珊瑚增殖系数

        Figure 1.  Proliferation coefficient of sarcandra glabra induced by different culture medium

        图  2  不同增殖培养基诱导草珊瑚株高

        Figure 2.  Plant height of Sarcandra glabra induced by different culture medium

        表 3  草珊瑚增殖试验结果统计

        Table 3.  Statistics results on proliferation test of sarcandra glabra

        编号
        No.
        6-BA
        mg·L−1
        NAA
        mg·L−1
        AC=0 g·L−1AC=1 g·L−1
        平均增殖系数
        Proliferation coefficient
        平均芽高/cm
        Bud height/cm
        生长状况
        Growth status
        平均增殖系数
        Proliferation coefficient
        平均芽高/cm
        Bud height/cm
        生长状况
        Growth status
        1组1.00.23.091.67茎粗短2.182.98芽少苗高生根现象
        2组1.00.53.271.98茎粗长势好2.093.17芽少苗高生根现象
        3组2.00.24.552.12叶小茎粗1.913.27芽少苗高生根现象
        4组2.00.54.272.95叶较大茎粗2.092.75芽少苗高生根现象
        5组3.00.26.552.72叶较大茎粗2.462.90芽少苗高生根现象
        6组3.00.56.822.98长势好2.093.02芽少苗高生根现象
        7组4.00.27.460.74叶小、芽成簇无长势2.362.73芽少有生根现象
        8组4.00.57.270.79叶小茎粗无长势2.272.70芽少有生根现象
        9组5.00.510.640.68叶小叶黄茎粗芽成簇2.182.63芽少有生根现象
      • 表4可以看出,各因数水平组合间的生根情况无较大差异,几乎无侧根和须根,叶色油绿。随着NAA、IBA浓度的增加生根率增加,茎变粗,叶变大。综合比较,3组培养基诱导生根率达到100%,平均生根数大于6.5条,生根质量好,生根整齐,根茎较粗,叶较大,所以1/2B5+0.1 mg·L−1 NAA+0.8 mg·L−1 IBA培养基为草珊瑚生根培养最佳培养基。

        表 4  草珊瑚生根培养试验结果统计

        Table 4.  Statistics results of root culture test of Sarcandra glabra

        编号
        No.
        基本培养基
        Basic medium
        NAA
        mg·L−1
        IBA
        mg·L−1
        生根率/%
        Rooting rate /%
        平均生根数/条
        Rooting number
        平均株高/cm
        Plant height/cm
        生长状况
        Growth status
        1组1/2B50.10.495.504.563.83茎粗,叶大
        2组1/2B50.10.698.005.163.72茎较粗,叶大
        3组1/2B50.10.8100.006.513.51茎较粗壮,根较粗,叶大
        4组1/2B50.20.498.504.403.22茎粗壮,叶较大
        5组1/2B50.20.6100.003.883.92茎粗,叶较大
        6组1/2B50.20.8100.004.983.93茎较壮,根较粗、叶较大
        7组1/2B500.892.503.484.82茎细、根细长、叶小
        8组1/2B501.094.003.074.58茎细、根细长、叶小
      • 表5可以看出草珊瑚组培苗在4组基质中炼苗移栽成活率最高,成活率达94%,生长状况好,叶大,苗子长势壮。所以4组腐殖土∶椰糠∶珍珠岩∶泥土=5∶2∶1∶2组合基质为草珊瑚移栽最佳基质。

        表 5  草珊瑚炼苗移栽试验结果统计

        Table 5.  Statistics results on acclimatization and transplant of Sarcandra glabra

        编号
        No.
        腐殖土
        humus
        soil
        椰糠
        Coconut bran
        珍珠岩
        Perlite
        泥土
        Soil
        成活率
        survival
        ratio/%
        生长情况
        Growth status
        1组901078.33苗弱,叶色偏黄
        2组801185.67苗较壮,叶色偏绿,
        3组711192.67苗较壮,叶色绿,
        4组521294.00苗壮,叶色绿、长势快
        5组531188.33苗较壮,叶小,叶绿
        6组601381.67苗较壮,叶小,叶绿
        7组1000080.67苗弱,叶小,叶色偏黄

        图  3  草珊瑚组织培养过程

        Figure 3.  Tissue culture process of Sarcandra glabra

      • (1)草珊瑚无菌株建立的外植体最佳时间为4—5月,最佳外植体是从基部长出的健壮半木质化枝条的基部茎段;

        (2)草珊瑚增殖培养要求大量元素的量不能太高,B5是草珊瑚组织培养的最适基本培养基。AC=0 mg·L−1,B5+3.0 mg·L−1 6-BA+0.5 mg·L−1 NAA是草珊瑚增殖继代最佳培养基配方。

        (3)草珊瑚继代周期较长约2~3个月左右,培养最佳温度为20~25 ℃,最佳光照强度为400~800 LX,pH值在5.4~6.0之间。激素6-BA在芽诱导和增殖中均起关键性作用,随着6-BA浓度的增加增殖系数随之增加,但当浓度增加到大于3.0 mg·L−1时芽矮成簇不抽高,叶色黄,叶小向下反卷;生长素NAA在各个培养阶段中都起重要作用,在增殖培养过程中NAA与6-BA比值决定了草珊瑚长势,苗子的抽长和木质化程度随之增加而加大;加入活性炭的培养基诱导草珊瑚几乎无新芽产生,但能促进组培苗的长高,有利于成簇的芽的抽长,新长出来的叶色为深绿色,富有光泽。

        (4)草珊瑚比较容易生根,在继代培养基中加入活性炭的部分幼苗也会生根。根的着生部位主要在叶柄与茎段连接处,木质化比较高的草珊瑚苗生根早,越靠近基部的茎节生根较早且根数多,几乎无须根。

    参考文献 (11)

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